Атипичные микобактерии и пигментные варианты микобактерии туберкулеза: культуры атипичных форм микобактерии четырех групп по классификации Е. Runyon (1959): М. kansasii (1-я группа), М. scrofulaceum (2-я), М. avium (3-я), М. phlei (4-я); подкожно заражено 60 морских свинок, внутривенно — 60 белых мышей и 60 кроликов; культуры пигментированных вариантов, близкие ко 2-й группе (3194, 2368), выделенные из 1-го и 4-го биологических пассажей субстратов инкапсулированного очага с кальцинацией в легких и из гиперплазированного бронхопульмонального лимфатического узла практически здоровых в отношении туберкулеза людей; культуры 1391, 1011, 2366, 1883, полученные как ревертанты нестабильных L-форм микобактерии in vitro; внутривенно заражено 70 белых мышей; пигментные варианты, близкие к 4-й группе — 2442, выделенная из инкапсулированного очага с кальцинацией практически здорового в отношении туберкулеза человека, и 1389, полученная как ревертант нестабильных L-форм in vitro; внутривенно заражено 20 белых мышей.
Типичные и измененные формы BCG: вакцина BCG С232 К5684 ИЭМ им. Н. Ф. Гамалеи; подкожно вакцинировано 18 морских свинок; смешанные культуры BCG и их L-вариантов (2823, 507, 110 + ), выделенные из послевакцинных комплексов детей через 2 нед — 4 мес после внутрикожной вакцинации; подкожно вакцинировано 18 морских свинок. культура условно-стабильных L-форм (2920), выделенная из послевакцинного комплекса ребенка через 7 лет после внутрикожной вакцинации; подкожно введена 10 морским свинкам; культуры пигментированных вариантов BGG (3091 и 3385), являющиеся ревертантамн нестабильных L-форм BCG in vivo и выделенные из 6-го и 7-го биологических пассажей субстрата послевакцинного комплекса 11-месячного ребенка; внутривенно введены 22 белым мышам. Биологические свойства использованных культур и характеристика экспериментов приведены в соответствующих главах. Всего в контрольных экспериментах использовано 328 морских свинок, 172 белые мыши, 60 кроликов.
Двум морским свинкам с целью контроля подкожно введена полужидкая среда, используемая для элективного выделения L-вариантов и BCG. У животных при этом возникает местный отек с последующим рассасыванием, в органах же патологических изменений не выявлено. На протяжении всех экспериментов животных взвешивали через —2 нед. Всех животных через определенное время после инокуляции подвергали эвтаназии декапитацией. Перед эутаназией ставили внутрикожную пробу Манту с АТК 1 : 10 в 0, 1 мл изотонического раствора. Туберкулиновые реакции учитывали через 24 и 48 ч.
Всего в нашем исследовании использовано 1054 морские свинки, 172 белые мыши и 60 кроликов. Макроскопические изменения в тканях и органах животных оценивали по принятой в ЦНИИТ МЗ СССР схеме.
Место заражения (кожа или яичко), регионарные и отдаленные лимфатические узлы, легкие, печень, селезенка, почки после фиксации в 12% нейтральном формалине и заливки в целлоидин разрезали на серийные срезы (до 8—10 из каждого субстрата). Препараты окрашивали классическими гистологическими методами, описанными выше. Патоморфологическое качественное описание препаратов сочетали с количественной оценкой процесса.